Için Tek Sonlu Cam Mikroskop Slayt 7101 Laboratuvar kullanımı
Cam mikroskop sürgüsü |
Kod |
Boyut (mm) |
Stil |
Malzeme |
CTN boyutu (cm) |
Paketleme |
GW (kg) |
TYI-7101 |
25.4 * 76.2 |
Cilalı kenar |
Cam |
37 * 18 * 16 |
50 parça 65 parça/kutu, 72 parça/kutu, 50 kutu/ctn |
13 |
TYI-7102 |
Kesme kenarı |
TYI-7105 |
Bir slaytta buzlanmış |
TYI-7107 |
Buzlu çift taraflı |
Cam sürgüsün kullanımı
- Yayma yöntemi, malzemeyi cam slaytta eşit olarak filme alma yöntemidir. Leke malzemeleri arasında tek hücreli organizmalar, küçük yosun, kan, bakteriyel kültür sıvısı, hayvan ve bitkilerin gevşek dokuları, ifadeler, anneler vb. bulunmaktadır. Bulaşırken, (1) cam sürgüsü temiz olmalıdır. (2) slaytlar düz olmalıdır. (3) Kaplama homojen olmalıdır. Damlacığı kaydırakın sağ ortasına uygulayın ve bir neşter bıçağı veya kürdan kullanarak eşit şekilde yayın. (4) Kaplama ince olmalıdır. Bir başka slayt kullanın ve düzgün bir şekilde ince bir katman uygulamak için, sürgü yüzeyi boyunca sağa-sola doğru hafifçe itin (iki slayt arasındaki açı 30°-45° olmalıdır). (5) Sabit. Sabitleme için sabitleme amacıyla, kimyasal sabitleyiciler veya kurutma yöntemleri (bakteriler) kullanılabilir. (6) Dyeing. Metilen mavisi bakteriler, Wright'ın kan lekesi ve bazen iyot için kullanılır. Boya solüsyonu tüm kaplamalı yüzeyleri kaplamalıdır. (7) durulayın. Emici kağıt ile kurutunuz veya kurutunuz. (8) Kömür. Uzun süreli saklama için Kanada sakız ile kapatın.
- Tablet bastırma yöntemi, biyolojik malzemenin cam sürgüsü ile kapak kayması arasına yerleştirildiği ve doku hücrelerinin dağılması için belirli bir basıncın uygulandığı bir masa yöntemidir.
- Montaj yöntemi, lam örnekleri yapmak için biyolojik malzemelerin bir bütün olarak sızdırmazlık yöntemidir. Bu yöntem geçici veya kalıcı montaj yapmak için kullanılabilir. Montaj malzemeleri şunları içerir: Chlamydomonas, Spirogyra, amoeba ve nematodlar; hidra, bitkilerin yaprak epidermisi; kanatlar, ayaklar, böceklerin ağız kısımları, insan ağız epithelial hücreler vb.
(1) sürgüyü tutarken, düz bir şekilde tutulmalı veya platformun üzerine yerleştirilmelidir. Su damlarken su uygun olmalıdır, böylece kapak kaymasıyla kaplıdır. (2) Malzeme, parçalanan iğne veya aynı düzlemde üst üste binmeyen ve düzleştirilmiş cımbızlar. (3) Kapak yerleştirilirken su damlacıklarını bir taraftan diğer tarafa doğru yavaşça örtün baloncukların görünmesini önleyin. (4) lekelenirken, kapağın bir tarafına bir damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damla damlatıp diğer taraftan çıkarın örneği kapak kaymasına eşit bir şekilde boyamak için emici kağıt ile. Lekelendikten sonra aynı şekilde bir damla su damlatın ve boyama solüsyonu ve mikroskop altında gözlemleyin.
- Dilimler, canlı organizmalardan kesilmiş ince dilimlerden yapılmış lam örneklerdir. Farklı gereksinimler nedeniyle jilet bıçağı serbest elle kesitlere ayırma için kullanılabilir veya doku bloğu parafin veya kollodionun içine gömülebilir veya düşük sıcaklıkta donabilir ve mikropla dilimlenebilirler. Optik mikroskop gözlemlemesi için 5-10 mikron kalınlığında dilimler halinde kesin. Epoksi reçine veya methakrilik aside gömülü doku bloklarından kesilen ve 20-50 nanometre kalınlığındaki ultra ince bölümler, elektron mikroskop altında gözlem yapmak için özel olarak tasarlanmıştır. Genel öğretimde kullanılan kök uçlar ve saplar gibi bölümlere genellikle parafin bölümleri denir.
Temizleme yöntemi
Su veya alkolle yıkayın ve ardından pamuklu veya gazlı bezle silin (lens dokusunu kullanmak, parmak izlerinin üzerinde kalmaması için slayta parmaklarınızla dokunmaktan kaçınmak en iyisidir; bu bir sonraki gözlem ve kullanımı etkiler)